标本处理与预处理

使用患者全名，加上出生日期或病历号等第二项标识。房间号、床号、楼层属于位置信息而非身份标识，不得使用。

标签需注明患者全名、身份识别号、采集日期与时间，以及采血人员的姓名缩写或工号。

采血完成后立即在患者面前贴标签，离开前完成。事先贴标签的风险在于：标签可能贴在最终没有采成的管上，或贴到错误患者的管上。

血型鉴定与交叉配血标本要求采血者在床边核对身份、床边贴标签，很多机构还要求佩戴专用血库腕带；任何不一致都会触发重新采集。

标签有误时，要么重新采集，要么由原采血者按实验室书面的重贴标签流程处理；不走流程私自更改标签会使标本失效。

标签应沿试管纵向粘贴，让检验人员仍能透过管壁看到液面高度和血清或血浆的颜色。

每装满一管立即缓慢、完整地上下颠倒混匀；用力摇晃会造成溶血和泡沫。常见次数是：枸橼酸管 3 至 4 次，分离胶血清管 5 次，肝素、EDTA 和氟化钠草酸盐管 8 至 10 次。

运送和放置时管盖朝上。直立可以促进血清管完全凝固、减少震荡导致的溶血，也能避免血液附着在管盖上、开盖时形成气溶胶。

多数项目要求在采集后 2 小时内把细胞与血清或血浆分开，因为细胞与液体持续接触会使葡萄糖下降，而钾、乳酸脱氢酶和磷升高。

普通血清管和分离胶管应在室温静置约 30 分钟完全凝固后再离心；过早离心会产生纤维蛋白丝，堵塞分析仪加样针。

血培养应尽快送入孵箱；血常规的 EDTA 标本冷藏约可稳定 24 小时；aPTT 标本一般须在约 4 小时内完成检测，PT 标本在室温下约 24 小时内完成。

急诊标本和定时标本（如糖耐量各时间点、血药浓度峰值与谷值、血培养）必须记录真实采集时间，因为结果要对照这个时间来判读。

血氨、乳酸、动脉血气、胃泌素、甲状旁腺激素、同型半胱氨酸和儿茶酚胺应放在冰水混合浆中运送，而不是直接放在冰块上；冰水浆能均匀降温，又不会在接触点把细胞冻裂。

全血降温会使钾从红细胞中漏出，导致结果假性升高，冷藏还会改变血细胞参数，因此常规生化和血液学标本一律保持室温。

胆红素、维生素 B12、叶酸、维生素 A、胡萝卜素和卟啉遇光会降解，须用锡箔包裹或使用棕色避光管；新生儿胆红素是最经典的考点例子。

冷凝集素、冷球蛋白和冷纤维蛋白原从采集到分离全程须保持 37 摄氏度，使用预热试管或加热模块，因为目标蛋白一旦降温就会析出。

部分外送项目要求分离出血浆或血清后冷冻；冷冻的必须是分装管，绝不能冷冻原始全血管，因为全血冷冻会彻底溶血。

无论是快递运送还是气动传输系统，都必须把标本维持在项目要求的温度范围内，接收实验室要记录到达时的状态；本该冰浴却送到时是温的，属于拒收。

把尺寸相同、装量相同的试管放在正对面的孔位；转子不平衡会产生振动，导致溶血、损坏仪器，甚至打碎试管。

多数血清和血浆管在盖紧管盖的状态下离心约 10 分钟，相对离心力按试管厂家说明设定，常见范围约为 1000 至 1300 g。

让转子自行完全停止；强行刹车或提前开盖会使细胞重新悬浮，而离心中破裂的试管还可能把感染性物质变成气溶胶。

分离胶屏障一旦形成，再次离心可能把待测物截留在胶层以下，或把细胞挤过胶层，造成生化结果假性改变。只能按实验室规程操作，且胶层成型后不得再离心。

把血清或血浆转移到分装管时，分装管必须写上与原管一致的身份标识和标本编号，操作时不要扰动细胞层，更不能把一位患者的血清倒入另一位患者的容器。

在防护屏后方或使用开盖器开管，管口朝向远离面部的方向，因为开盖时释放的气溶胶是有文献记载的暴露途径。

红细胞破裂释放细胞内成分，因此钾、乳酸脱氢酶、天冬氨酸转氨酶、镁、磷和铁会假性升高，钠被稀释而偏低，红色色素还会干扰胆红素等比色法项目。

酒精未干就进针、使用比 23G 更细的针、用力摇晃、用注射器经针头把血强行推入试管、止血带绑扎过久、末梢采血时挤压，以及含添加剂管采血量不足，都会剪切或破坏红细胞。

脂血是近期进食脂肪或未空腹采血造成的乳白色浑浊，会阻碍光学检测；黄疸标本因胆红素过高呈黄褐色。两者都干扰比色法，在预处理环节需备注。

EDTA 或枸橼酸管内出现凝块，说明混匀延迟或不充分；血细胞计数和凝血结果均无效，必须重新采集，不能靠过滤或再摇晃来补救。

低于检测方法所需体积的标本按 QNS（量不足）拒收。枸橼酸凝血管只要没采满就直接拒收，因为这改变了固定的 9:1 比例。

实验室会拒收以下标本：无标签或标签错误、用错管型或防腐剂、溶血、凝块、量不足、使用过期试管、渗漏或污染、运输温度错误，以及超过该项目稳定时限才送达。