Capítulo 3 de 520% del examen
Manejo y procesamiento de muestras
Lo que le ocurre al tubo entre el brazo del paciente y el analizador decide si el resultado sirve. Este capítulo cubre el etiquetado, la mezcla, las condiciones de transporte, los límites de tiempo, la centrifugación y los defectos que obligan al laboratorio a rechazar una muestra.
Etiquetado con dos identificadores
Una muestra bien tomada pero mal etiquetada es más peligrosa que no tener muestra, porque el resultado se creerá y se actuará sobre él. El etiquetado exige dos identificadores propios del paciente, cotejados con la orden y, en hospitalizados, con el brazalete. La ubicación física del paciente nunca cuenta como identificador.
Dos identificadores, ambos propios del paciente
Use el nombre completo más un segundo identificador como la fecha de nacimiento o el número de expediente. El número de cuarto, de cama o el piso son datos de ubicación, no identificadores, y no pueden usarse.
The Joint Commission NPSG.01.01.01Qué lleva la etiqueta
La etiqueta incluye el nombre completo del paciente, el número de identificación, la fecha y hora de la recolección y las iniciales o el código del flebotomista.
CLSI GP33Etiquete después de la toma y junto al paciente
Los tubos se etiquetan una vez terminada la extracción y en presencia del paciente, antes de retirarse. Preetiquetar arriesga poner la etiqueta en un tubo que nunca se llenó o que se tomó de otra persona.
CLSI GP33El banco de sangre es más estricto
Las muestras para tipificación y pruebas cruzadas exigen verificar la identidad junto a la cama, etiquetar ahí mismo y con frecuencia colocar un brazalete específico de banco de sangre; cualquier discrepancia obliga a repetir la toma.
AABB Standards for Blood Banks and Transfusion ServicesNunca corrija una etiqueta encima
Si una etiqueta está mal, la muestra se vuelve a tomar o se corrige únicamente mediante el procedimiento documentado de reetiquetado del laboratorio y por quien la extrajo; alterar la etiqueta fuera de ese proceso invalida la muestra.
La colocación de la etiqueta importa
Pegue la etiqueta a lo largo del tubo para que el personal técnico pueda ver el nivel de la muestra y el color del suero o plasma a través de la pared.
Mezcla, transporte y límites de tiempo
Los tubos con aditivo solo funcionan si la sangre entra en contacto con el aditivo de inmediato, por eso el número de inversiones cambia según el tubo. Una vez tomadas, las muestras se transportan en posición vertical y se entregan dentro de ventanas definidas, porque las células siguen metabolizando dentro del tubo. La mayoría de los retrasos se manifiestan como desviaciones químicas mucho antes de que algo se vea mal.
Invierta con suavidad, no agite
Mezcle con inversiones completas y lentas justo después de llenar cada tubo; agitar produce hemólisis y espuma. Las cuentas habituales son 3 a 4 para citrato, 5 para tubos separadores de suero y 8 a 10 para heparina, EDTA y fluoruro con oxalato.
CLSI GP41Transporte en posición vertical
Traslade y coloque los tubos con el tapón hacia arriba. La posición vertical favorece la coagulación completa en los tubos de suero, reduce la hemólisis por agitación y evita sangre en el tapón que pueda aerosolizarse al abrirlo.
CLSI GP44Separe suero o plasma en dos horas
Para la mayoría de los analitos las células deben separarse del suero o plasma dentro de las dos horas siguientes a la toma, porque mientras están en contacto la glucosa baja y el potasio, la LDH y el fósforo suben.
CLSI GP44Los tubos de suero requieren coágulo completo
Deje coagular los tubos rojos y con gel sin moverlos unos 30 minutos a temperatura ambiente antes de centrifugar; centrifugar antes genera hebras de fibrina que obstruyen las sondas del analizador.
Ventanas de tiempo frecuentes
Los hemocultivos van a la incubadora lo antes posible, las muestras de EDTA para biometría son estables unas 24 horas refrigeradas, el aPTT se procesa en unas 4 horas y el TP en unas 24 horas a temperatura ambiente.
CLSI H21Muestras urgentes y cronometradas
Las tomas urgentes y cronometradas, como la curva de tolerancia a la glucosa, los picos y valles de fármacos y los hemocultivos, deben registrar la hora real de recolección, porque el resultado se interpreta contra ese reloj.
Temperatura y luz: muestras con manejo especial
Una minoría de analitos se destruye con el manejo ordinario y exige enfriamiento, calor o protección de la luz. Estas listas son cortas, cerradas y muy preguntadas, así que conviene memorizarlas por categoría en lugar de deducirlas. Fíjese también en lo que nunca debe enfriarse, porque refrigerar una muestra de rutina genera sus propios errores.
Muestras en frío
Transporte en mezcla de hielo y agua, no sobre hielo sólido, el amonio, el lactato, los gases arteriales, la gastrina, la hormona paratiroidea, la homocisteína y las catecolaminas; la mezcla enfría de manera uniforme sin congelar las células en el punto de contacto.
CLSI GP44No enfríe potasio ni biometría
Enfriar sangre total hace que el potasio salga de los glóbulos rojos y eleva falsamente el resultado, y la refrigeración distorsiona los índices celulares, así que los tubos de química de rutina y hematología se mantienen a temperatura ambiente.
Muestras protegidas de la luz
La bilirrubina, la vitamina B12, el folato, la vitamina A, el caroteno y las porfirinas se degradan con la luz y se envuelven en papel aluminio o se recolectan en tubos ámbar; la bilirrubina neonatal es el ejemplo clásico del examen.
CLSI GP44Muestras a temperatura corporal
Las crioaglutininas, las crioglobulinas y el criofibrinógeno deben mantenerse a 37 grados Celsius desde la toma hasta la separación, con tubo precalentado o bloque térmico, porque la proteína buscada precipita al enfriarse.
CLSI GP44Alícuotas congeladas
Algunos estudios de referencia exigen separar y congelar el plasma o suero; congele la alícuota y nunca el tubo original de sangre total, ya que congelar sangre total la hemoliza por completo.
Temperatura durante el traslado
El transporte por mensajería o tubo neumático debe mantener la muestra en el rango que la prueba exige, y el laboratorio receptor documenta las condiciones de llegada; una muestra que debía llegar en hielo y llega tibia se rechaza.
Centrifugación y procesamiento
La centrifugación separa las células del líquido con velocidad y tiempo controlados, y hacerlo mal es una causa frecuente de muestras inservibles. Las dos reglas operativas son equilibrar la carga y no abrir nunca un rotor en movimiento. Las dos reglas analíticas son dejar coagular antes de girar y no volver a centrifugar un tubo con gel.
Equilibre posiciones opuestas
Coloque tubos del mismo tamaño y con el mismo volumen justo enfrente uno del otro; un rotor desequilibrado vibra, hemoliza las muestras, daña el equipo y puede romper tubos.
Centrifugado estándar
La mayoría de los tubos de suero y plasma se centrifugan con el tapón puesto unos 10 minutos a la fuerza centrífuga relativa que indique el fabricante del tubo, comúnmente entre 1000 y 1300 g.
CLSI GP44Nunca abra una centrífuga en movimiento
Deje que el rotor se detenga por completo por sí solo; frenar o abrir la tapa antes resuspende las células, y un tubo roto durante el giro puede aerosolizar material infeccioso.
No recentrifugue un tubo con gel
Una vez formada la barrera de gel, volver a centrifugar puede atrapar analitos por debajo del gel o empujar células a través de él y alterar falsamente la química. Solo se repite según el procedimiento del laboratorio y nunca con el gel ya formado.
Alicuote con cuidado
Traspase el suero o plasma a un tubo de alícuota etiquetado con los mismos identificadores y número de muestra que el tubo original, sin remover la capa celular, y nunca vierta el suero de un paciente en el recipiente de otro.
Destape con seguridad
Abra los tubos detrás de una barrera o con un dispositivo destapador y con la boca dirigida lejos de la cara, porque el aerosol liberado al destapar es una vía de exposición documentada.
OSHA 29 CFR 1910.1030Hemólisis, otras interferencias y criterios de rechazo
La hemólisis es el error preanalítico más común en flebotomía y casi siempre se debe a la técnica de recolección y no al paciente. Aprenda a reconocer el suero rosado o rojo, qué analitos arruina y qué errores de técnica la producen. Los criterios de rechazo son la lista formal del laboratorio de razones por las que una muestra no puede analizarse.
Qué le hace la hemólisis a los resultados
La ruptura de glóbulos rojos libera contenido intracelular, por lo que potasio, LDH, AST, magnesio, fósforo y hierro salen falsamente altos, el sodio se diluye a la baja y el pigmento rojo interfiere con la bilirrubina y otros métodos colorimétricos.
Causas de hemólisis en la toma
Alcohol que no se dejó secar, aguja más fina que calibre 23, agitación vigorosa, empujar sangre de una jeringa a través de la aguja hacia el tubo, torniquete prolongado, exprimir un sitio capilar y tubos con aditivo llenados a medias cizallan o rompen las células.
CLSI GP41Lipemia e ictericia
La lipemia es turbidez lechosa por ingesta reciente de grasa o toma sin ayuno y bloquea las lecturas ópticas; la ictericia es el tono amarillo pardo por bilirrubina elevada. Ambas interfieren con los ensayos fotométricos y se anotan al procesar.
Muestra anticoagulada con coágulo
Un coágulo en un tubo de EDTA o citrato indica mezcla tardía o incompleta; el conteo celular y la coagulación quedan invalidados y hay que repetir la toma, no filtrar ni volver a agitar la muestra.
Cantidad insuficiente y llenado incompleto
Una muestra por debajo del volumen que el método exige se rechaza como QNS. En los tubos de citrato para coagulación cualquier llenado incompleto se rechaza de inmediato porque altera la proporción fija de nueve a uno.
CLSI H21Lista estándar de rechazo
El laboratorio rechaza muestras sin etiqueta o mal etiquetadas, en tubo o conservador equivocado, hemolizadas, coaguladas, con volumen insuficiente, tomadas en tubo caducado, con fuga o contaminadas, transportadas a temperatura incorrecta o entregadas fuera del límite de estabilidad del analito.
CLSI GP44Pon a prueba tus conocimientos
Preguntas de práctica sobre Manejo y procesamiento de muestras